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麻醉大鼠動脈血壓的測定(直接測定法)

麻醉大鼠動脈血壓的測定(直接測定法)
實驗試劑

1. 20%氨基甲酸乙酯(Urethane)注射液或者1.5%****鈉(Phentobarbital Sodium)注射液

2. 1%普魯卡因注射液

3. 0.3%肝素生理鹽水注射液

實驗設備

1. 常用實驗器械一套

2. 家兔或者大鼠實驗臺一個

3. 用于家兔或者大鼠的聚乙烯醫用塑料導管(家兔用導管外徑為2mm,內徑為1.5mm;大鼠用導管外徑為1mm,內徑為0.8mm)

4. 壓力換能器及其多通道生理信號采集記錄儀器

實驗材料

家兔,體重為2kg左右;大鼠,體重為200~250g左右。

實驗步驟 

1. 頸總動脈測量動脈血壓

取體重為200~250g左右的大白鼠,用20%氨基甲酸乙酯注射液0.5ml/100g或者1.5%****鈉注射液0.2ml/100g,腹腔注射麻醉,待動物被麻醉后,將其固定在實驗臺上,頸總動脈分離分離出一側的頸總動脈約2cm。插管前將導管和壓力換能器內充滿0.3%肝素生理鹽水注射液,排走氣泡,并且準備好記錄儀器。然后先將頸總動脈遠心端結扎,近心端用動脈夾夾住,在遠心端結扎處的動脈壁上用眼科剪刀以45°角度剪口,將準備好的頸總動脈插管向近心端插入約1cm,用近心端的穿線結扎動脈血管和導管,松開動脈夾將導管再送入約1cm左右,即可看到動脈的血壓波形,再用遠心端的結扎線結扎固定插管,等動物穩定5min左右,就可以開始實驗內容了。

2. 股動脈測量動脈血壓

取體重為200~250g左右的大白鼠,用20%氨基甲酸乙酯注射液0.5ml/100g或者1.5%****鈉注射液0.2ml/100g,腹腔注射麻醉,待動物被麻醉后,分離出約1cm左右。同樣插管前將動脈插管和壓力換能器內充滿0.3%肝素生理鹽水注射液,排走氣泡,并且準備好記錄儀器。然后先將股動脈遠心端結扎,近心端用動脈夾夾住,或者用近心端的穿線輕輕提起血管,阻斷血流。在遠心端結扎處的動脈壁上用眼科剪刀以45°角度剪口,將準備好的動脈插管向近心端插入約0.5cm,松開動脈夾,或者松開近心端的提線,將插管再送入約1cm左右,用近心端的穿線結扎動脈血管和插管,即可看到股動脈的血壓波形,再用遠心端的結扎線結扎固定插管,等動物穩定5min左右,就可以開始實驗內容了。

3. 指標及含義 

反映動脈血壓變化的指標有三個,它們是:收縮壓(systolic blood pressure,SBP)、舒張壓(diastolic blood pressure,DBP)、平均動脈壓(mean blood pressure, MBP)。

注意事項

經總動脈插管測量血壓的方法,頸部手術的操作要輕巧,用血管鉗鈍性分離肌肉組織,用玻璃分針分離迷走神經和頸總動脈,這樣出血少,對血管的刺激小,方便插管操作。經股動脈插管測量血壓的方法相對難度較大,因為手術視野小、股動脈血管細、分離出來的血管也短,所以操作更要求細心、輕巧。


 

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